НЕЙРО-МОТОРНЫЙ АППАРАТ ИКРОНОЖНОЙ МЫШЦЫ КРЫСЫ В УСЛОВИЯХ ФОРМИРОВАНИЯ КОМПЕНСАТОРНОЙ ИННЕРВАЦИИ

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ 3
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 5
1.1 Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные
повреждением нервного волокна 5
1.2 Восстановление двигательной функции после повреждения нервного волокна 9
1.3 Электрическая активность скелетных мышц 11
1.4 Роль стромальных клеток в восстановлении нерва 16
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 19
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 19
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 21
3.1 Моторный (М-) ответ. 21
3.2 Рефлекторный (H-) ответ 27
3.3 Отношение максимальных амплитуд рефлекторного и моторного ответов икроножной мышцы крысы при подсадке стромальных клеток. 31
ВЫВОДЫ 34
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 35

1.1 Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные повреждением нервного волокна
В середине прошлого века было показано, что пересеченные нервные волокна подвергаются распаду на всем протяжении дистальнее места повреждения [Waller, 1850]. Валлеровская (вторичная) дегенерация нервных волокон дистальнее места их перерезки происходитв любом случае, независимо от сроков соединения концов пересеченного нерва. Уже в первые часы после травмыдистальнее места повреждения возникают морфологические изменения нервных волокон. При повреждении аксона его открытый проксимальный конец подвергается ретракции, несколько утолщается и в течение нескольких минут закрывается за счет слипания мембран [Carbonettoetal., 1987]. На 3-и сутки после повреждения седалищного нерва у крыс на расстоянии 5 ммдистальнее зоны повреждения миелиновые оболочки набухают и разволокняются,[Жук, Калюнов, 1996].
...

1.2 Восстановление двигательной функции после повреждения нервного волокна
При нарушении функции нерва, иннервирующего мышцу, восстановление утраченных свойств осуществляется за счет сохранившихся нервных волокон, которые начинают интенсивно ветвиться. Это ветвление, получившее в литературе название «спраутинг» (от англ. ― tosprout— пускать ростки, ветвиться), лежит в основе формирования компенсаторно- восстановительной реиннервации.Регенерация аксонов периферической нервной системы включает закономерно развертывающуюся сложную последовательность процессов, в ходе которых отросток нейрона активно взаимодействует с глиальными клетками на фоне реактивных изменений,
обусловленных повреждением [Millesi, 1990; Evans, 2001; Ciardelli, Chiono, 2006].
Различают два вида спраутинга — коллатеральный и терминальный (регенераторный).
...

1.3 Электрическая активность скелетных мышц
1.3.1 Моторный ответ (М-ответ)
Моторный ответ (М-ответ) - суммарный электрический потенциал мышцы в ответ на одиночное электрическое раздражение двигательного или смешанного нерва. Супрамаксимальная стимуляция нерва, позволяющая регистрировать электрический ответ всех двигательных единиц мышцы, является стандартизованной в регистрации и оценке М-ответа, а также в методике оценки скорости проведения по двигательным волокнам. М-ответ при субмаксимальной стимуляции нерва имеет меньшую амплитуду и
длительность, другую форму, отличную от моторного ответа при супрамаксимальной стимуляции. Анализируемыми параметрами М-ответа являются: латентность, амплитуда, длительность, площадь и форма. Необходимо регистрировать порог раздражения (порог М-ответа) — минимальное электрическое раздражение, способное вызвать М-ответ. Грубое повышение порога М-ответа наблюдается при поражении нерва или мышцы, снижение порога встречается крайне редко.
...

1.4 Роль стромальных клеток в восстановлении нерва
Одним из перспективных подходов к лечению повреждений периферической нервной системы является терапевтический нейрогенез, основанный на введении в денервированные ткани генетических конструкций с генами нейротрофических факторов или стволовых/прогениторных клеток. Стромальные стволовые клетки, выделенные из костного мозга или жировой ткани, считаются перспективным инструментом для стимуляции регенерации поврежденной ткани благодаря своей способности стимулировать рост кровеносных сосудов и нервных волокон. Способность стромальных стволовых клеток стимулировать ангиогенез связывают с их способностью секретировать ангиогенные факторы роста и стабилизировать формирующиеся сосуды. На моделях ишемии конечностей и миокарда у животных показано, что локальное и системное введение. Стромальные стволовые клетки способствует увеличению количества сосудов в тканях с нарушенным кровоснабжением и улучшению перфузии тканей кровью [Парфеновассоавт.
...

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Эксперимент был выполнен на 20 белых беспородных крысах весом 150-200 грамм. Животные содержались в стандартных условиях со свободным доступом к корму и воде. Опытных животных делили на 2 группы, в каждой из которых было по 10 крыс: В первой (I) группе животным перерезали нерв и формировали собственную аутонервную вставку 1 см. Во второй (II) группе так же была сформирована собственная аутонервная вставка 1 см., но с подсадкой стромальных клеток жировой ткани. Оперативные вмешательства производили микрохирурги центра травматологии ГУЗ РКБ МЗ РТ под уретановым наркозом (600 мг/кг внутрибрюшинно).
Методом стимуляционнойэлектронейромиографии (ЭНМГ) на сроках 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42 суток после операции производилась изучение компенсаторной реорганизации двигательной функции нейро - моторного аппарата икроножных мышц крыс. Раздражающие игольчатые электроды вкалывали параллельно бедренной кости на 1-2 см выше коленного сустава в область проекции седалищного нерва.
...

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Начиная с 3-их суток после операции производилась оценка динамики восстановления двигательной функции икроножной мышцы крысы, иннервируемой седалищным нервом.

3.1 Моторный (М-) ответ.
3.1.1 Порог возникновения.

Числовые значения порога М-ответа на 3 сутки после повреждения составили: 313.1±70 % (р<0.05) у I группы животных; 294±78 % (р<0.05) у II группы по отношению к контролю. В дальнейшем порог М-ответа у I группы уменьшился, у II группы немного повысился и составил на 7 сутки - 373.8±38.4 % (р<0.05) и 308±96 % (р<0.05); на 14 сутки значения порога уменьшались у обеих групп и составили 213.1±49.7 и 112±27 % (р<0.05) (у I и II групп животных соответственно); на 21 сутки - 118±60 % (р<0.05) у I группы и 94±51.5 % (р<0.05) у II группы животных; на 28 сутки – 152,5±39 % (р<0.05) у I группы и 91±18 % (p>0.05) у II группы; на 35 сутки - 136±27 % (р<0.05) у I группы и 86±11 (р<0.05)% у животных II группы.
...

3.3 Отношение максимальных амплитуд рефлекторного и моторного ответов икроножной мышцы крысы при подсадке стромальных клеток.
Отношение максимальных амплитуд увеличивается на протяжении эксперимента увеличивается. На 14 сутки после травмы значение составляет 56±6 % (р>0.05) по отношению к контролю. На 21 сутки значение равно 47.1±12 % (р>0.05); на 28 - 89±13 % (р>0.05); на 35 – 63.2±18 % (р>0.05); на
42 – 38.9±7 % (р>0.05) по отношению к контролю (рисунок 9).

Рисунок 9 – Отношение максимальных амплитуд
Нmax/Mmaxикроножной мышцы крысы при перерезке седалищного нерва.
По оси абсцисс обозначены сутки после операции, по оси ординат черные столбцы –значения Hmax/Mmax, выраженные в процентах; серые –
контрольные значения, * – достоверность, (р < 0.05).
Как было показано в работах ранее, растущее отношение Нmax/Mmax свидетельствует о повышении рефлекторной возбудимости альфа- мотонейронов спинного мозга и так же может быть связано с ослаблением пресинаптического торможения.
...

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1) Акимов, Г.А. Современные представления о патогенезе, диагностике и лечении травматических поражений нервных стволов конечностей [Текст] / Г.А. Акимов, М.М. Одинак, С.А. Живолупов, С.Б. Силявин, Ю.Т. Шапков // Журн. невропат. и псих. им. С. С.Корсакова. - 1989.
- Т.89. - С.126-132.
2) Бабский,Е.Б. Физиология человека [Текст] / Е.Б. Бабский, В.Д. Глебовский, А.В. Коган и др. – М. : Медицина, 1985. – 544с. – ISBN 5-225- 04175-2.
3) Богданов, Э.И. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации [Текст] / Э.И. Богданов, Р.Р. Фасхутдинов // Журн. невропатол. и психиатр. - 1991.- Т. 91.- № 2.- С. 129-203.
4) Валиуллин, В.В. Нейротрофический контроль синтеза миозинов медленной мышцы морской свинки [Текст] / В.В. Валиуллин, Р.Р. Исламов // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1991.- Т.111.- № 2.- С. 201-203.
5) Волков, Е.М. Исследования нейротрофического контроля ионной проводимости мембраны фазных мышечных волокон лягушки [Текст] / Е.М. Волков, Г.А. Наследов, Г.И. Полетаев // Цитология.- 1981.- Т. 23.- № 7.- С. 803-810.
6) Волков, Е.М. Влияние pH на мембранный потенциал покоя мышечных волокон у лягушки [Текст] / Е.М. Волков // Физиол. ж. СССР.- 1983.- Т. 69.- № 9.- С. 1170-1175.
7) Волков, Е.М. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих [Текст] / Е.М. Волков, Г.И. Полетаев, Х.С. Хамитов [и др.] // Успехи совр.биол.- 1987.- Т.104.- № 6.- С. 412-425.
8) Волков, Е.М. Молекулярные механизмы нейрональной регуляции ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1989б.- Т. 108.- № 4.- С. 80-94.

9) Волков, Е.М. Нейротрофический контроль Na – проницаемости мембраны мышечного волокна [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1990.- Т. 109.- № 3.- С. 339-351.
10) Григорович, К.А. Хирургическое лечение повреждений нервов [Текст] / К.А. Григорович. – Л. : Медицина, 1981. – 304с.
11) Жук, О.Н. Влияние фактора роста нервов на регенерацию волокон в седалищном нерве крыс [Текст] / О.Н. Жук, В.Н. Калюнов // Морфология. - 1996. - Т.110. - С.113-115.
12) Карагяур, М.Н. Влияние мезенхимальных стволовых клеток на восстановление периферического нерва после травмы [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / М.Н. Карагяур ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2013. – 24с.
13) Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2009. – 25 с.
14) Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2011. – 25 с.
15) Парфенова, Е.В. Поиск новых «инструментов» для терапевтического ангиогенеза [Текст] / Е.В. Парфенова, З.И. Цоколаева, Д.О. Трактуев и др // Молекулярная медицина. - 2006. - Т.2. - С.10-23.
16) Резвяков, Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации [Текст] / Н.П. Резвяков // Архив анат., гистол. и эмбриол.- 1974.- Т. 66.- № 6.- С. 89-91.
17) Резвяков, Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц [Текст]: автореф. дис. ... д-ра мед.наук / Н.П. Резвяков. - Казань, 1982.- 23 с.

18) Трофимова, А.А. Использование аутонервной вставки для восстановления функций поврежденного седалищного нерва крысы [Текст] / А.А. Трофимова, А.М. Еремеев, Р.Ф. Масгутов, А.А. Богов // XXI Съезд физиологического общества им И.П.Павлова, Калуга, 2010 г. – C. 18.
19) Улумбеков, Э.Г. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон [Текст] / Э.Г. Улумбеков, Н.П. Резвяков; В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации мышц. - Л.: Наука, 1980.
- С. 84-104.
20) Altman, J. Post-natal origin of microneurones in the rat brain [Text] /
J. Altman, G.D. Das // Nature. - 1965. - P.953-6.
21) Ambron, R. Priming events and retrograde injury signals. A new perspective on the cellular and molecular biology of nerve regeneration [Text] / R. Ambron, E. Walters // Mol. Neurobiol.- 1996.- V. 13.- № 1.- P. 61-79.
22) Bayol, S. Phenotypic Expression of IGF Binding Protein Transcripts in Muscle, in Vitro and in Vivo [Text] / S. Bayol, P.T. Loughna, C. Brownson // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 2000.- V. 273.- № 1.- P. 282-286.
23) Bishop, D.L. The site effect on the mixed fibres in self-reinnervating flat muscles of a mouse [Text] / D.L. Bishop, R.L. Milton // Exp-Neurol.- 1997.- V. 147.- № 1.- P. 151-158.
24) Bowe, C.B. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text] / C.B. Bowe, Y.D. Kocsis// Dev. BraianPes. - 1987. - V.34. - P.123-131.
25) Bray, J.J. The membrane potential of rat diaphragm muscle fibers and the effect of denervation [Text] / J.J. Bray, M.J. Howken, J.J. Hubbard et al. // J. Physiol. - 1972. - V.255. -P.651-667.
26) Cancalon, P. The relationship of slow Axonal flow to nerve elongation and degeneration [Text]/ P. Cancalon// Advances in Neurochemistry. - 1984 - V.22. - Р.211-241.

27) Carbonetto, S. Nerve fiber growth in culture on tissue substrate from central and peripheral nervous systems [Text] / S. Carbonetto, D. Evans, P. Cochard // J. Neurosci.- 1987.- V. 7.- № 2.- P. 610-620.
28) Cheng, X. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text]/ X. Cheng // Dev. Braian. Pes.-1989.- V.34. - P.123-131.
29) Ciardelli, G.Materials for peripheral nerve regeneration [Text]/ G. Ciardelli,V. Chiono // Macromol. Biosci. - 2006. - №6. -P.13-26.
30) Cortright, R.N. Regulation of skeletal muscle UCP-2 and UCP-3 gene expression by exercise and denervation [Text] / R.N. Cortright, D. Zheng, J.P. Jones et al. // Am. J. Physiol.- 1999.- V. 276.- № 1.- P. 217-221.
31) De Angelis, C. Acetyl-L-carnitine prevents agedependent structural alterations in rat peripheral nerves and promotes regeneration following sciatic nerve injury in young and senescent rats [Text] / C. De Angelis, C. Scarfo, M. Falcinelli et al. // Exp. Neurol.- 1994.- V. 128.- P. 103-114.
32) De Vries, G.H. Schwann cell proliferation [Text]/ G.H. De Vries// Peripheral neuropathy. - Philadelphia: Saunders. 1993. - Р.290-8.
33) Evans, G.R. Peripheral nerve injury: a review and approach to tissue engineered constructs [Text]/ G.R. Evans // Anat. Rec. - 2001. - № 263.- P.396- 404.
34) Evans, G.R. Approaches to tissue engineered peripheral nerve [Text]
/ G.R. Evans // Clin Plastic. Surg. - 2003. - № 30. - P.559-63.
35) Fink, D.J. Retrograde axonal transport in rat sciatic nerve after nerve crush injury [Text] / D.J. Fink, D. Purkiss, M. Mata // Brain Res. Bull.- 1987.- V. 19.- № 1.- P. 29-34.
36) Finol, H.J. The effects of denervation on contractile properties or rat skeletal muscle [Text] / H.J. Finol, D.M. Lewis, R. Owens // J. Physiol.- 1981.- V. 319.- P. 81-92.
37) Gong, L. The effects of claudin 14 during early Wallerian degeneration after sciatic nerve injury [Text] / L. Gong, Y. Zhu, X. Xu, H. Li, W. Guo, Q. Zhao, D Yao // Neural regeneration research. – 2014. – P. 2151-8

38) Gutmann, E.Neurotrophic relation [Text] / E. Gutmann // Ann. Rev. Physiol.- 1976.- P. 177-216.
39) Gimble, J.M. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine [Text] / J.M. Gimble, A.J. Katz, B.A. Bunnell // Circ Res. - 2007. - V.100. - P.1249-60.
40) Hoffman, P.N. Changes in neurofilament transport coincide temporally with alterations in the caliber of axons in regenerating motor fibers [Text]/ P.N. Hoffman, G.W. Thompson, J. Grifin et al. // J. Cell Biol.- 1985. - V. 101.- P.1332- 1340.
41) Holubar, Y. The degeneration of peripheral fibers [Text] / Y. Holubar. - J.Newral., Newrosury and Psychiatry.- 1950.- V. 13.- № 2.- P. 89-105.
42) Hugh, G.Immunocytochemical analysis of myosin isoenzymes in denervated rat fast and slow muscles [Text] / G. Hugh, J.F.Y. Hoh // Proc. Austral. Physiol. and Pharmacol. Soc.- 1987.- V.18.- № 1.- P. 45.
43) Jakubiec-Puka, A. Contents of myosin heavy chains in denervated slow and fast rat leg muscles [Text] / A. Jakubiec-Puka, I. Ciechomska, J. Morga et al. // Comp. Biochem. Physiol. Biochem. Mol. Biol. - 1999.- V. 122.- № 3.- P. 355- 362.
44) Jewett, G.H. Motor activity patterns in rat soleus muscle after neonatal partial denervation [Text]/ G.H. Jewett, K.J. Walden // Neuromusc. Disor.
- 1985. - V.5. - P.179-186.
45) Kean, C.J. Dynamic properties of denervated fast and slow twitch muscle of the cat [Text] / C.J. Kean, D.M. Lewis, J.D. McGarrick // J. Physiol.- 1974.- V. 237.- № 1.- P. 103-113.
46) Kocsis, J.D. Schwann cells and their precursors for repair of central nervous system myelin [Text] / J.D. Kocsis, S.G. Waxman // Brain. - 2007. - V. 130. - P.1978-80.37-49.
47) Lewis, D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle [Text] / D.M. Lewis // J. Physiol.- 1972.- V. 222.- № 1.- P. 51-75.

48) Masayki,В. Electrophysiological study of regeneration from constricted ervefibres[Text]/ B. Masayki, K. Hideaki// Electromyogr. abdclin. Newrophisiol. - 1986. - V.26. - P.3-11.
49) Matysiak, G.R. Activity and motor units size in partially denervated rat medial gastrocnemius [Text] / G.R. Matysiak // J. Appl. Physiol.- 1986.- V. 76.- P. 2663-2671.
50) Meller, K. Early structural changes in the axoplasmic cytoskeleton after axotomy studied by cryofixation [Text] / K. Meller // Cell Tiss. Res.- 1987.- V. 250.- № 3.- P. 663-672.
51) Millesi, H. Peripheral nerve surgery today: turning point or continuous development? [Text]/ H. Millesi// J Hand Surg [Br]. - 1990. - №15. - P.28.
52) Moonen, G.Neurotrophic factors: past and future [Text] / G. Moonen,
B. Malgrange, J.M. Rigo et al. // Acta Neurol. Belg.- 1996.- V. 96.- № 3.- P. 203- 218.
53) Movaghar, B. Induced bone marrow stromal cells into Schwann cells by progesterone improved the outcome of transected sciatic nerve model [Text] /
B. Movaghar, T. Tiraihi, M. Javan et al. // J Neurosurg Sci. – 2015.
54) Murakami, T.Transplanted neuronal progenitor cells in a peripheral nerve gap promote nerve repair [Text]/ T. Murakami, Y. Fujimoto, Y. Yasunaga,
O. Ishida,N. Tanaka, Y. Ikuta, M. Ochi// Brain Res. - 2003. -P.17-24.
55) Myckatyn, T. Stem cell transplantation and other novel techniques for promoting recovery from spinal cord injury [Text] / T. Myckatyn, S.E. MacKinnon, J.W. McDonald // Transpl. Immunol. - 2004. - № 12. - P.343-58.
56) Nakagami, H. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy [Text] / H. Nakagami, R. Morishita, K. Maeda et al. // J AtherosclerThromb. - 2006. - V.13. - P.77-8.
57) Otto, D. Pharmacological effects of nerve growth factor and fibroblast growth factor applied to the transectioned sciatic nerve on neuron death in adult

dorsal root ganglia [Text]/ D. Otto, K.Unsicker,C. Grothe// Neurosci. Lett. - 1987.
- № 83. - P.156-60.
58) Raimondo, S. Schwann cell behavior after nerve repair by means of tissue-engineered muscle-vein combined guides [Text] / S. Raimondo, S. Nicolino,
P. Tos, B. Battiston, M.G. Giacobini- Robecchi, I. Perroteau, S. Geuna // J. Comp. Neurol. - 2005. - № 489. -P.249-59.
59) Rath, E.M. Impaired peripheral nerve regeneration in a mutant strain of mice with a Schwann cell defect [Text]/ E.M. Rath, D. Kelly, T.W. Bouldin, B. Popko // J.Neurosci. - 1995. - №15. -P.7228-37.
60) Rehman, J. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells [Text] / J. Rehman, D. Traktuev, J. Li et al // Circulation. - 2004. - V.109. - P.1292-8.
61) Reynolds, B.A. Weiss, Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system [Text] / B.A. Reynolds, S. Weiss // Science. - 1992. - P.1707-10.
62) Rubina, K. Adipose Stromal Cells Stimulate Angiogenesis via Promoting Progenitor Cell Differentiation, Secretion of Angiogenic Factors, and Enhancing Vessel Maturation [Text] / K. Rubina, N. Kalinina, A. Efimenko, T. Lopatina, V. Melikhova, Z. Tsokolaeva, V. Sysoeva, V. Tkachuk, Y. Parfyonova // Tissue Eng Part A. - 2009. - V.15. - P.2039-50.
63) Schlaepfer, W.W. Calcium-activated pro-tease and the regulation of the axonal cytoskeleton [Text]/ W.W. Schlaepfer, U. Zimmerman // Advances in Neurochemistry. – 1984. - V.22. - Р.261-273.
64) Sjoberg, J. Insulin-like growth factor (IGF-I) as a stimulator of regeneration in the freeze-injured rat sciatic nerve [Text]/ J. Sjoberg, M.Kanje // Brain Res. - 1989. - № 485. -P.102-8.
65) Sobol, J.B. Effects of delaying FK506 administration on neuroregeneration in a rodent model [Text] / J.B. Sobol, J.B. III Lowe, R.K. Yang,
S.K. Sen, D.A. Hunter, . E. Mackinnon// J. Reconstr. Microsurg. - 2003. - №19. - P.113-8.

66) Syrovy, I. Effect of exercise on skeletal muscle myosin ATP-ase activity [Text] / I. Syrovy, E. Gutmann, J. Melichna // Physiol. Bohemoslov.- 1972.- V. 21.- № 6.- P. 633-638.
67) Terenghi, G. Peripheral nerve injury and regeneration [Text]/ G. Terenghi// Histol.Histopathol. - 1995. - №10. -P.709-18.
68) Tohill, M.Stem cell plasticity and therapy for injuries of the peripheral nervous system [Text]/ M. Tohill,G. Terenghi // Biotechnol. Appl. Biochem. - 2004. - №40. -P.17-24.
69) Tower, S.S. Atrophy and denervation in skeletal muscle [Text] / S.S. Tower // Amer. J. Anat.- 1935.- V. 56.- P. 1- 44.
70) Tower, S.S. The reaction of muscle to denervation [Text] / S.S. Tower
// Physiol. Rev.- 1939.- V. 19.- P. 1- 48.
71) Waller, A.Eхperiments on the section of the glossopharyngeal and hypoglossal nerves of the frog and observations produced the reby in the structure of their primitive fibres [Text] / A. Waller // Philosoph. Trans. London.- 1850.- V. 140.- P. 423-429.
72) Williams, L.R.Modification of fibrin matrix formation in situenhances nerve regeneration in silicone chambers [Text]/ L.R. Williams, S.Varon // J. Comp. Neurol. - 1985. - №231. -P.209-20.
73) Zhang, D.Z. Transplantation of autologous adipose-derived stem cells ameliorates cardiac function in rabbits with myocardial infarction [Text] / D.Z. Zhang, L. Gai, H.W. Liu et al // Chin. Med. J. - 2007. - V.120. - P.300-7
74) Zhou, L.N. Co-Graft of Bone Marrow Stromal Cells and Schwann Cells Into Acellular Nerve Scaffold for Sciatic Nerve Regeneration in Rats [Text] /
L.N. Zhou, J.W. Zhang, X.L. Liu et al. // J Oral Maxillofac Surg. – 2015. – P.00197-4