Курсовая тоже на отлично)))
Подробнее о работе
Гарантия сервиса Автор24
Уникальность не ниже 50%
Представители рода стафилококки является неспорообразубщими, неподвижными, грамположительным кокками. При формировании колонн образуют виноградные грозди (кластера), входят в состав нормальной микрофлоры кожного покрова человека (рис. 1.). Стафилококки - представители семейства Micrococcaceae. Существует более 26 видов стафилококков, но лишь некоторые из них представляют угрозу для здоровья человека. Самым опасным считаеют золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus), отличающийся от остальных наличием фермента коагулазы. [1,7]
Золотистый стафилококк занимает первое место в статистике по формированию внебольничной пневмонии в стационарах хирургического профиля. В последние годы отчетливо прослеживается тенденция роста ВБИ, вызванных условно-патогенными грамположительными микроорганизмами и, в частности, представителями рода Staphylococcus. Согласно 9 изданию "Определителя бактерий Берджи" (1997) стафилококки отнесены к группе грамположительных факультативно анаэробных кокков вместе с родами Aerococcus, Enterococcus, Gemella, Lactococcus, Leuconostoc, Melissococcus, Pediococcus, Saccharococcus, Stomatococcus, Streptococcus, Trichococcus и Vagococcus. Также по данным статистики РАМ было посчитано, что внебольничные и внутрибольничные инфекции, вызванные Staphylococcus aureus, по длительности, по стоимости лечения и по летальности в 2 раза выше, чем при иных инфекциях. [2,5,17]
Выделенные штаммы исследованы на чувствительность к антибиотикам с использованием ДДМ. Диффузные методы менее точны, чем методы разведений, но более просты в исполнении и позволяют определять чувствительность к нескольким ЛС одновремнно [3]. Посев исследуемого материала проводился на стандартную среду АГВ в соответствии с наставлениями по применению. Для определения чувствительности использован «Набор No1 для определения чувстивительности стафилококков к противомикробным препаратам», производимый научно-исследовательским центром фармакотерапии города Санк-Петербурга. Выбор лекарственных препаратов для определения антибиотикограммы осуществляется с учетом спектра антимикробной активности, а также наличия препарата в медицинских частях учреждений. В перечень включены 6 антибактериальных препаратов. [4]
Работа направленная на изучение чувствительности золотистого стафилококка к антибактериальным препаратам ( а именно: эритромицин, карбенициллин, гентамицин, оксациллин, ванкомицин, цефазолин)
1. The economic impact of Staphylococcus aureus infection / R. J. Rubin [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2018. - No 17. – P. 9-17.
2. Зайцевб А. А. Стафилококки и ванкомицин : тенденции противостояния / А. А. Зайцев, О. И. Карпов, С. В. Сидоренко // Антибиот. химиотер. – 2016. - Т. 48, No 8. - С. 20-26.
3. Результаты многоцентрового исследования чувствительности стафилококков к антибиотикам в Москве и Санкт-Петербурге /
4. С. В. Сидоренко [и др.] // Антибиот. химиотер. – 2018. – Т. 43, No 7. – С. 15-25.
5. Эпидемиология антибиотикорезистентности нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в России : результаты многоцен- трового исследования / А. В. Дехнич [и др.] // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2016. - No 4. – С. 325-336.
6. Страчунский, Л. С. Состояние антибиотикорезистентности к антиинфекционным химиопрепаратам / Л. С. Страчунский, Т. М. Богданович // Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / под ред. Л. С. Страчунского, Ю. Б. Белоусова, С. Н. Козлова. - М., 2017. - С. 32-39.
7. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам : методические указания МУК 4.2. 1980-4 // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2016. – Т. 8, No 12. - С. 306–359.
8. НиколаеваИ.В.,АнохинВ.А.,АйнутдиноваИ.А.Характеристика кишечной микрофлоры у здоровых детей раннего возраста г.Казани. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2019; 2: 30–34.
9. Садраддин, А. оглы А. Особенности резистентности к антибиотикам штаммов Staphylococcus aureus, выделенных при внутрибольничных инфекциях // Теоретическая и клиническая медицина. Казанский медицинский журнал. - 2020. – Т. 101, No 3. – С. 325-329.
10. Haruna T., Kariya S., Fujiwara T., Higaki T., Makihara S., Kanai K. et al. Association between Impaired IL-10 Production Following Exposure to Staphylococcus aureus Enterotoxin B and Disease Severity in Eosinophilic Chronic Rhinosinusitis. Allergol Int. 2018;67(3):392–398. doi: 10.1016/j.alit.2018.02.001.
11. Štrelingerová J., Lengyelová L., Boldiš M., Rybansky L., Mrazova M., Mráz M., Zelenák A. Colonisation of Staphylococcus aureus in Patients with Nasal Polyposis. Neuro Endocrinol Lett. 2019;40(1 Suppl.):37–42. doi: 10.1007/ s11882-019-0853-7.
12. Laidlaw T.M., Mullol J., Woessner K.M., Amin N., Mannent L.P. Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps and Asthma. J Allergy Clin Immunol Pract. 2021;9(3):1133–1141. doi: 10.1016/j.jaip.2020.09.063.
13. Vickery T.W., Ramakrishnan V.R., Suh J.D. The Role of Staphylococcus aure-
14. us in Patients with Chronic Sinusitis and Nasal Polyposis. Curr Allergy
15. Asthma Rep. 2019;19(4):21. doi: 10.1007/s11882-019-0853-7.
16. Teufelberger A.R., Bröker B.M., Krysko D.V., Bachert C., Krysko O.
17. Staphylococcus aureus Orchestrates Type 2 Airway Diseases. Trends Mol
18. Med. 2019;25(8):696–707. doi: 10.1016/j.molmed.2019.05.003.
19. Flora M., Perrotta F., Nicolai A., Maffucci R., Pratillo A., Mollica M. et al. Staphylococcus Aureus in Chronic Airway Diseases: An Overview. Respir Med. 2019;155:66–71. doi: 10.1016/j.rmed.2019.07.008.
20. Martens K., Seys S.F., Alpizar Y.A., Schrijvers R., Bullens D.M.A., Breynaert C. et al. Staphylococcus aureus Enterotoxin B Disrupts Nasal Epithelial Barrier Integrity. Clin Exp Allergy. 2021;51(1):87–98. doi: 10.1111/ cea.13760.
21. Calus L., Derycke L., Dullaers M., Van Zele T., De Ruyck N., Pérez-Novo C. et al. IL-21 Is Increased in Nasal Polyposis and after Stimulation with Staphylococcus aureus Enterotoxin B. Int Arch Allergy Immunol. 2017;174(3–4):161–169. doi: 10.1159/000481435.
22. Cheng K.J., Wang S.Q., Xu Y.Y. Different Roles of Staphylococcus aureus Enterotoxin in Different Subtypes of Nasal Polyps. Exp Ther Med. 2017;13(1):321–326. doi: 10.3892/etm.2016.3951.
23. Ryu G., Kim D.W. Th2 Inflammatory Responses in the Development of Nasal Polyps and Chronic Rhinosinusitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2020;20(1):1–8. doi: 10.1097/ACI.0000000000000588.
24. Si D., Rajmokan M., Lakhan P. et al. Surgical site infections following coronary artery bypass graft procedures: 10 years of surveillance data. BMC Infect. Dis. 2014; 14: 318. DOI: 10.1186/1471-2334-14-318.
Не подошла эта работа?
Закажи новую работу, сделанную по твоим требованиям
Представители рода стафилококки является неспорообразубщими, неподвижными, грамположительным кокками. При формировании колонн образуют виноградные грозди (кластера), входят в состав нормальной микрофлоры кожного покрова человека (рис. 1.). Стафилококки - представители семейства Micrococcaceae. Существует более 26 видов стафилококков, но лишь некоторые из них представляют угрозу для здоровья человека. Самым опасным считаеют золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus), отличающийся от остальных наличием фермента коагулазы. [1,7]
Золотистый стафилококк занимает первое место в статистике по формированию внебольничной пневмонии в стационарах хирургического профиля. В последние годы отчетливо прослеживается тенденция роста ВБИ, вызванных условно-патогенными грамположительными микроорганизмами и, в частности, представителями рода Staphylococcus. Согласно 9 изданию "Определителя бактерий Берджи" (1997) стафилококки отнесены к группе грамположительных факультативно анаэробных кокков вместе с родами Aerococcus, Enterococcus, Gemella, Lactococcus, Leuconostoc, Melissococcus, Pediococcus, Saccharococcus, Stomatococcus, Streptococcus, Trichococcus и Vagococcus. Также по данным статистики РАМ было посчитано, что внебольничные и внутрибольничные инфекции, вызванные Staphylococcus aureus, по длительности, по стоимости лечения и по летальности в 2 раза выше, чем при иных инфекциях. [2,5,17]
Выделенные штаммы исследованы на чувствительность к антибиотикам с использованием ДДМ. Диффузные методы менее точны, чем методы разведений, но более просты в исполнении и позволяют определять чувствительность к нескольким ЛС одновремнно [3]. Посев исследуемого материала проводился на стандартную среду АГВ в соответствии с наставлениями по применению. Для определения чувствительности использован «Набор No1 для определения чувстивительности стафилококков к противомикробным препаратам», производимый научно-исследовательским центром фармакотерапии города Санк-Петербурга. Выбор лекарственных препаратов для определения антибиотикограммы осуществляется с учетом спектра антимикробной активности, а также наличия препарата в медицинских частях учреждений. В перечень включены 6 антибактериальных препаратов. [4]
Работа направленная на изучение чувствительности золотистого стафилококка к антибактериальным препаратам ( а именно: эритромицин, карбенициллин, гентамицин, оксациллин, ванкомицин, цефазолин)
1. The economic impact of Staphylococcus aureus infection / R. J. Rubin [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2018. - No 17. – P. 9-17.
2. Зайцевб А. А. Стафилококки и ванкомицин : тенденции противостояния / А. А. Зайцев, О. И. Карпов, С. В. Сидоренко // Антибиот. химиотер. – 2016. - Т. 48, No 8. - С. 20-26.
3. Результаты многоцентрового исследования чувствительности стафилококков к антибиотикам в Москве и Санкт-Петербурге /
4. С. В. Сидоренко [и др.] // Антибиот. химиотер. – 2018. – Т. 43, No 7. – С. 15-25.
5. Эпидемиология антибиотикорезистентности нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в России : результаты многоцен- трового исследования / А. В. Дехнич [и др.] // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2016. - No 4. – С. 325-336.
6. Страчунский, Л. С. Состояние антибиотикорезистентности к антиинфекционным химиопрепаратам / Л. С. Страчунский, Т. М. Богданович // Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / под ред. Л. С. Страчунского, Ю. Б. Белоусова, С. Н. Козлова. - М., 2017. - С. 32-39.
7. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам : методические указания МУК 4.2. 1980-4 // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2016. – Т. 8, No 12. - С. 306–359.
8. НиколаеваИ.В.,АнохинВ.А.,АйнутдиноваИ.А.Характеристика кишечной микрофлоры у здоровых детей раннего возраста г.Казани. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2019; 2: 30–34.
9. Садраддин, А. оглы А. Особенности резистентности к антибиотикам штаммов Staphylococcus aureus, выделенных при внутрибольничных инфекциях // Теоретическая и клиническая медицина. Казанский медицинский журнал. - 2020. – Т. 101, No 3. – С. 325-329.
10. Haruna T., Kariya S., Fujiwara T., Higaki T., Makihara S., Kanai K. et al. Association between Impaired IL-10 Production Following Exposure to Staphylococcus aureus Enterotoxin B and Disease Severity in Eosinophilic Chronic Rhinosinusitis. Allergol Int. 2018;67(3):392–398. doi: 10.1016/j.alit.2018.02.001.
11. Štrelingerová J., Lengyelová L., Boldiš M., Rybansky L., Mrazova M., Mráz M., Zelenák A. Colonisation of Staphylococcus aureus in Patients with Nasal Polyposis. Neuro Endocrinol Lett. 2019;40(1 Suppl.):37–42. doi: 10.1007/ s11882-019-0853-7.
12. Laidlaw T.M., Mullol J., Woessner K.M., Amin N., Mannent L.P. Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps and Asthma. J Allergy Clin Immunol Pract. 2021;9(3):1133–1141. doi: 10.1016/j.jaip.2020.09.063.
13. Vickery T.W., Ramakrishnan V.R., Suh J.D. The Role of Staphylococcus aure-
14. us in Patients with Chronic Sinusitis and Nasal Polyposis. Curr Allergy
15. Asthma Rep. 2019;19(4):21. doi: 10.1007/s11882-019-0853-7.
16. Teufelberger A.R., Bröker B.M., Krysko D.V., Bachert C., Krysko O.
17. Staphylococcus aureus Orchestrates Type 2 Airway Diseases. Trends Mol
18. Med. 2019;25(8):696–707. doi: 10.1016/j.molmed.2019.05.003.
19. Flora M., Perrotta F., Nicolai A., Maffucci R., Pratillo A., Mollica M. et al. Staphylococcus Aureus in Chronic Airway Diseases: An Overview. Respir Med. 2019;155:66–71. doi: 10.1016/j.rmed.2019.07.008.
20. Martens K., Seys S.F., Alpizar Y.A., Schrijvers R., Bullens D.M.A., Breynaert C. et al. Staphylococcus aureus Enterotoxin B Disrupts Nasal Epithelial Barrier Integrity. Clin Exp Allergy. 2021;51(1):87–98. doi: 10.1111/ cea.13760.
21. Calus L., Derycke L., Dullaers M., Van Zele T., De Ruyck N., Pérez-Novo C. et al. IL-21 Is Increased in Nasal Polyposis and after Stimulation with Staphylococcus aureus Enterotoxin B. Int Arch Allergy Immunol. 2017;174(3–4):161–169. doi: 10.1159/000481435.
22. Cheng K.J., Wang S.Q., Xu Y.Y. Different Roles of Staphylococcus aureus Enterotoxin in Different Subtypes of Nasal Polyps. Exp Ther Med. 2017;13(1):321–326. doi: 10.3892/etm.2016.3951.
23. Ryu G., Kim D.W. Th2 Inflammatory Responses in the Development of Nasal Polyps and Chronic Rhinosinusitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2020;20(1):1–8. doi: 10.1097/ACI.0000000000000588.
24. Si D., Rajmokan M., Lakhan P. et al. Surgical site infections following coronary artery bypass graft procedures: 10 years of surveillance data. BMC Infect. Dis. 2014; 14: 318. DOI: 10.1186/1471-2334-14-318.
Купить эту работу vs Заказать новую | ||
---|---|---|
0 раз | Куплено | Выполняется индивидуально |
Не менее 40%
Исполнитель, загружая работу в «Банк готовых работ» подтверждает, что
уровень оригинальности
работы составляет не менее 40%
|
Уникальность | Выполняется индивидуально |
Сразу в личном кабинете | Доступность | Срок 1—6 дней |
300 ₽ | Цена | от 500 ₽ |
Не подошла эта работа?
В нашей базе 149278 Курсовых работ — поможем найти подходящую